Sumário · 13 seções
- 1. Esquema geral
- 2. Lançadeira de carnitina
- 3. Quatro reações da espiral de Lynen
- 4. Rendimento energético para o palmitato (C16)
- 5. Oxidação de ácidos graxos insaturados
- 6. Oxidação de ácidos graxos de cadeia ímpar
- 7. Vias alternativas
- 8. Cetogênese
- 9. Regulação
- 10. Especificidades teciduais
- 11. Erros inatos da β-oxidação
- 12. Significado clínico
- 13. FAQ
Em resumo. A β-oxidação é a via mitocondrial de catabolismo dos ácidos graxos (AG). Etapas: ativação no citosol (acil-CoA), lançadeira de carnitina através das membranas mitocondriais, espiral de Lynen de 4 reações (desidrogenação por FAD → hidratação → desidrogenação por NAD⁺ → thiólise), liberação de acetil-CoA → ciclo de Krebs. Palmitato (C16) → 8 acetil-CoA + 7 FADH₂ + 7 NADH = 106 ATP. No jejuno/jejum, o fígado converte o excesso de acetil-CoA em corpos cetônicos. Distúrbios: deficiência de MCAD (a congênita mais comum), VLCAD, CPT I/II — hipoglicemia + ↑ de enzimas musculares durante jejum/exercício.
1. Esquema geral
- A principal via de catabolismo dos AG ocorre nas mitocôndrias.
- Ativação dos AG no citosol: AG + ATP + CoA → acil-CoA + AMP + PPi (acil-CoA sintetase).
- O transporte de AG de cadeia longa (> C14) através da membrana mitocondrial interna é mediado pela lançadeira de carnitina.
- Os ácidos graxos de cadeia média (C6–C12) e curta (< C6) penetram diretamente.
- Na matriz: «espiral de Lynen» — 4 reações, liberando acetil-CoA a cada ciclo.
- Acetil-CoA → ciclo de Krebs → CO₂ + H₂O + ATP.
2. Lançadeira de carnitina
- CPT I (carnitina palmitoiltransferase I) na superfície externa da membrana interna: acil-CoA + carnitina → acilcarnitina + CoA.
- Carnitina/acilcarnitina translocase — transporte através da membrana.
- CPT II no lado da matriz: acilcarnitina + CoA → acil-CoA + carnitina.
- Regulação: o malonil-CoA inibe a CPT I — o «interruptor» entre a biossíntese de AG e a β-oxidação.
- Com baixa insulina/predomínio de glucagon, há ↓ de malonil-CoA → ↑ da β-oxidação.
3. Quatro reações da espiral de Lynen
- Desidrogenação: acil-CoA + FAD → trans-Δ²-enoil-CoA + FADH₂ (acil-CoA desidrogenase: SCAD/MCAD/LCAD/VLCAD conforme o comprimento da cadeia).
- Hidratação: enoil-CoA + H₂O → 3-hidroxiacil-CoA (enoil-CoA hidratase).
- Desidrogenação por NAD⁺: 3-hidroxiacil-CoA + NAD⁺ → 3-cetoacil-CoA + NADH (3-hidroxiacil-CoA desidrogenase).
- Thiólise: 3-cetoacil-CoA + CoA → acil-CoA (−2 C) + acetil-CoA (β-cetotiolase).
Resultado de uma volta: −2 carbonos, +1 FADH₂, +1 NADH, +1 acetil-CoA.
4. Rendimento energético para o palmitato (C16)
- 7 voltas da espiral → 7 FADH₂ + 7 NADH + 8 acetil-CoA.
- 7 FADH₂ × 1,5 ATP = 10,5 ATP.
- 7 NADH × 2,5 ATP = 17,5 ATP.
- 8 acetil-CoA × 10 ATP (ciclo de Krebs + cadeia transportadora de elétrons) = 80 ATP.
- Menos 2 ATP para a ativação (ATP → AMP).
- Total: 108 − 2 = 106 ATP (valor clássico); com novos valores de P/O — ~106–108.
5. Oxidação de ácidos graxos insaturados
- São necessárias enzimas adicionais: enoil-CoA isomerase (move a dupla ligação para trans-Δ²) e 2,4-dienoil-CoA redutase (para duplas ligações em posições pares).
6. Oxidação de ácidos graxos de cadeia ímpar
- No final da espiral, forma-se propionil-CoA (3C).
- Propionil-CoA → metilmalonil-CoA (propionil-CoA carboxilase, biotina) → succinil-CoA (metilmalonil-CoA mutase, B12) — via glicogênica.
- Deficiência de B12 ou biotina → acúmulo de ácido metilmalônico.
7. Vias alternativas
- β-oxidação peroxissomal — ácidos graxos muito longos (VLCFA > C22), ramificados (ácido fitânico — ω-oxidação + α-oxidação).
- ω-oxidação — no RE liso (CYP4A); utilizada quando há alteração na β-oxidação.
- α-oxidação — para o ácido fitânico (doença de Refsum em caso de deficiência de fitanoil-CoA hidroxilase).
8. Cetogênese
- Durante jejum, dieta cetogênica, cetoacidose diabética (CAD) — o excesso de acetil-CoA no fígado não consegue ser oxidado totalmente no ciclo de Krebs.
- 2 acetil-CoA → acetoacetil-CoA → HMG-CoA → acetoacetato → β-hidroxibutirato; de forma espontânea → acetona.
- Os corpos cetônicos são transportados para os tecidos extra-hepáticos (cérebro, músculos, coração) — convertidos de volta em acetil-CoA.
- O fígado não pode oxidar corpos cetônicos (falta a enzima succinil-CoA:acetoacetato CoA-transferase).
9. Regulação
- Hormônios: a insulina inibe a β-oxidação (através do ↑ de malonil-CoA), enquanto o glucagon e as catecolaminas ativam a lipólise e a β-oxidação.
- Controle metabólico: alta razão NADH/NAD⁺ e acetil-CoA/CoA diminui a velocidade da β-oxidação.
- PPARα — receptor nuclear, ativado por AG/fibratos → ↑ da expressão de enzimas da β-oxidação.
- AMPK — ativada em caso de déficit energético, inibe a ACC → ↓ de malonil-CoA → ↑ da β-oxidação.
10. Especificidades teciduais
- O fígado é o principal órgão de cetogênese e β-oxidação durante o jejum.
- A musculatura esquelética é ativa durante o exercício aeróbico prolongado.
- O coração prefere ácidos graxos (60–90% da energia); em caso de isquemia, muda para glicose.
- O cérebro não utiliza ácidos graxos (barreira hematoencefálica); em jejum > 3 dias, 2/3 são atendidos por corpos cetônicos.
- As hemácias não possuem mitocôndrias, apenas glicólise.
11. Erros inatos da β-oxidação
| Defeito | Clínica | Diagnóstico |
|---|---|---|
| Deficiência de MCAD (a mais frequente) | Hipoglicemia + hipocetonemia durante o jejum/infecção; síndrome semelhante à de Reye | Espectro de acilcarnitinas (C6–C10), mutações no gene ACADM |
| Deficiência de VLCAD | Cardiomiopatia, rabdomiólise induzida por esforço, hipoglicemia | Acilcarnitinas C14:1, genética |
| LCHAD, proteína trifuncional | Hipoglicemia, cardiomiopatia, retinopatia, neuropatia periférica, HELLP na mãe | Espectro de acilcarnitinas (C16-OH, C18-OH) |
| CPT I | Hipoglicemia, hepatomegalia, creatinofosfoquinase (CK) normal | Carnitina sérica baixa, urinária alta |
| CPT II | Forma muscular: rabdomiólise com esforço, frio, jejum; forma neonatal/letal | ↑ CK, acilcarnitinas (C16, C18) |
| Deficiência sistêmica de carnitina | Cardiomiopatia, fraqueza muscular, hipoglicemia | Carnitina sanguínea baixa; correção com L-carnitina |
| Doença de Refsum | Retinopatia pigmentar, polineuropatia, ataxia cerebelar | ↑ Ácido fitânico; dieta com exclusão de laticínios/carne bovina |
12. Significado clínico
- CAD: deficiência de insulina → lipólise + β-oxidação → cetogênese → acidose metabólica.
- Cetoacidose alcoólica: jejum + etanol → ↑ NADH/NAD⁺ → desvio para o β-hidroxibutirato (teste de acetoacetato negativo!).
- Hipoglicemia neonatal na deficiência de MCAD — triagem em todos os recém-nascidos nos países desenvolvidos.
- Ácido valproico — inibe a β-oxidação, risco de hepatotoxicidade em crianças < 2 anos com defeito não diagnosticado na β-oxidação.
- Fibratos — ativam o PPARα → ↑ β-oxidação → ↓ triglicerídeos.
13. FAQ
Por que o malonil-CoA «alterna» entre a síntese de ácidos graxos e sua oxidação?
O malonil-CoA é o precursor da síntese de ácidos graxos (ACC); simultaneamente inibe o CPT I → bloqueia o transporte de ácidos graxos para a mitocôndria. Assim, a célula não oxida os ácidos graxos que acabou de sintetizar.
Por que o fígado não possui a reação reversa de utilização de corpos cetônicos?
Falta a succinil-CoA-acetoacetato-CoA-transferase (tioforase). O fígado produz cetonas para tecidos extra-hepáticos, enquanto ele próprio utiliza acetil-CoA diretamente.
Por que a deficiência de MCAD é perigosa em caso de febre em uma criança?
Os estoques de glicose se esgotam, a mobilização de ácidos graxos ocorre — mas a oxidação está bloqueada → hipoglicemia grave sem cetonemia, encefalopatia, síndrome semelhante à de Reye, risco de morte súbita.
O que é «hipoglicemia hipocetótica»?
O clássico dos defeitos da β-oxidação: jejum → glicose baixa, mas quase não há corpos cetônicos na urina (os ácidos graxos não são oxidados). Diferença do jejum normal (cetose) e do insulinoma (sem cetonemia também, mas com insulina ↑).
Para que serve a determinação do espectro de acilcarnitinas?
O método de espectrometria de massa em tandem detecta acilcarnitinas específicas que se acumulam em diferentes defeitos da β-oxidação. É a base da triagem neonatal.
Veja também: Ciclo de Krebs · Glicólise · Lipídios · CAD · Catálogo de Bioquímica